Осмотически активные макромолекулы в интерстициальном пространстве

Поскольку в интерстициальном пространстве, кроме белков плазмы крови, присутствуют и другие осмотически активные макромолекулы (гиалуроновая кислота, хондроитинсульфат, коллаген), которые, взаимодействуя с белками плазмы, могут способствовать повышению онкотического давления тканей. Модельные эксперименты показали, что смесь, включающая 1,6% белка, 20% коллагена и 4% гиалуроновой кислоты, обусловливает онкотическое давление порядка 16,6 мм рт. ст., т. е. более высокое по сравнению с величинами тканевого онкотического давления, измеренными ранее [Wiederhielm С., Black L., 1976]. Таким образом, эффективная концентрация белков в интерстиции должна быть в 2 раза выше по сравнению с объемом всего интерстициального пространства.

Соответственно и осмотическое давление, обусловленное белками, должно быть выше по сравнению с расчетами, основанными на оценке концентрации белков во всем интерстициальном пространстве. Данные С. Wiederhielm (1977) показывают, что величина тканевого онкотического давления должна колебаться между 9—11 мм рт. ст. при концентрации белка 3,5%, которая аналогична концентрации белков в лимфе, собранной из большинства органов.

Между тем, серьезным препятствием для единодушного признания высказанных выше положений явились результаты измерения интерстициального давления с помощью непрямых методов.

Один из них, получивший название «фитильного» метода (wick-method), основан на введении в подкожную соединительную ткань относительно толстых полиэтиленовых канюль (диаметром ~ 1 мм) или гиподермальных игл (диаметром ~0,6 мм) с боковым отверстием и пучком хлопковых или нейлоновых нитей (фитилем), которые с помощью полиэтиленовой трубки соединялись с преобразователем давления [Scholander P. et al., 1968; Fadnes Н. et al., 1977].

Практическое применение этого метода¹ позволило обнаружить отрицательное давление интерстициальной жидкости, величина которого чаще всего колебалась от —0,65 до — 4 мм рт. ст. Следует отметить, что, если «фитиль» предварительно пропитывался изотоническим раствором хлорида натрия, давление интерстициальной жидкости колебалось от —2,5 до +1 мм рт. ст. Отрицательные величины интерстициального давления регистрировались во всех случаях, когда гиподермальные иглы с «фитилем» предварительно заполнялись сывороткой крови или гиалуроновой кислотой [Fadnes Н. et al., 1977]. Заметим, что опыты P. Snashall и соавт. (1971), в которых «фитиль» пропитывался смесью, состоящей из раствора Рингера и 1% раствора гиалуроновой кислоты, интерстициальное давление также колебалось от —3 мм рт. ст. до атмосферного.

¹В связи с быстротой измерения интерстициального давления «фитильный» метод был модифицирован для клинического применения [Snashall D- et al., 1971].

«Микролимфология», В.В.Купирянов, Ю.И. Бородин

• Конвекционное перемещение макромолекул
• Элементарные объемы матрикса основного вещества в интерстициальном пространстве
• Двухфазная модель организации интерстициального пространства
• Важность вопросов о перемещениях интерстициальной жидкости
• Поперечносвязанные ячеистые гели
• Представление интерстициального пространства в качестве двухфазной системы
• Определение коэффициента отражения
• Свободная вода в интерстициальном пространстве
• Изучение коррозионных препаратов
• Связывание трансэндотелнальных «каналов» в стенке кровеносных микрососудов
• Подкожный метод регистрации величины интерстициального давления, необходимого для инъекции в ткань минимального количества жидкости
• Результаты пункционных методов измерения гидростатического давления